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逆轉(zhuǎn)錄(reverse transcription)是以 RNA 為模板合成 DNA 的過程,即 RNA 指導(dǎo)下的 DNA 合成。在實際的操作過程中,還會有各種問題,現(xiàn)做詳細解答!
1. 如何提高 RT-PCR 反應(yīng)的靈敏度與特異性?
① 確定模板 RNA 完整性好,無 DNA 污染。
② RNA 模板中不應(yīng)含有擴增反應(yīng)抑制劑。
③ 使用適量的模板 RNA ,模板量太多會降低特異性,太少會導(dǎo)致擴增不出條帶或條帶太弱。
④ 若模板中有二級結(jié)構(gòu),可通過提高逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)溫度來提高擴增效果。
2. RNA 中含有逆轉(zhuǎn)錄抑制劑時,怎么處理?
逆轉(zhuǎn)錄抑制劑包括:SDS 、EDTA 、甘油、焦磷酸鈉、亞精胺和胍鹽等等??蓪⒁汛_定的高質(zhì)量 RNA 模板同樣品混合,同高質(zhì)量 RNA 模板比較產(chǎn)量以檢測 RNA 抑制劑;若高質(zhì)量模板 RNA 與樣品混合后產(chǎn)量降低,則說明樣品中存在逆轉(zhuǎn)錄抑制劑,可用70%(v/v)乙醇對 RNA 沉淀進行清洗,以除去抑制劑。
3. 逆轉(zhuǎn)錄后的 qPCR 實驗 Ct 值偏大或者普通 PCR 產(chǎn)量低。
① RNA 模板質(zhì)量差,需要重新制備 RNA 模板,可通過瓊脂糖凝膠電泳檢測質(zhì)量。
② 逆轉(zhuǎn)錄后的 cDNA 中含有高濃度的模板 RNA 和逆轉(zhuǎn)錄試劑成分,可能會對后續(xù)的PCR 產(chǎn)生抑制作用,所以可以適當梯度提高 cDNA 稀釋比例(通常來說可將 cDNA 原液稀釋5-10倍,其最佳模板加入量以擴增得到的 Ct 值在20-30個循環(huán)為好)。
③ 起始的 RNA 模板量低,需要減少稀釋倍數(shù)或增加 RNA 模板量。
④ 基因本身原因(復(fù)雜和長度),可以重新設(shè)計復(fù)雜基因的引物,避免復(fù)雜結(jié)構(gòu)。或者用三步法程序或延長兩步法程序的延伸時間。
⑤ 逆轉(zhuǎn)錄或者定量產(chǎn)品性能差,可以通過做平行不用品牌產(chǎn)品對比實驗,對比逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)品性能。
4. 逆轉(zhuǎn)錄酶擴增效率評估,應(yīng)該關(guān)注哪些指標?
建議: qPCR-ct 值,或者 PCR 產(chǎn)量
如果想比較逆轉(zhuǎn)錄性能,最為直接的還是后續(xù)做 qPCR 或者 PCR 平行對比實驗,這種方法相對較為準確。
不建議:cDNA 中間產(chǎn)物濃度測定 or 其他方法。
逆轉(zhuǎn)錄完成后是不建議測定產(chǎn)物濃度的,由于逆轉(zhuǎn)錄后產(chǎn)生 RNA-cDNA 雜交鏈,溶液中的 RNA 和部分 DNA 會對吸光值產(chǎn)生影響,所以測定出來的產(chǎn)物濃度并不準確,即使利用同一批次 RNA 和不同品牌的試劑盒進行對比實驗,由于不同品牌之間的逆轉(zhuǎn)錄體系具有或多或少的差異,其體系中的各種離子等都能對吸光度產(chǎn)生影響,所以測定的結(jié)果也沒有可比性。